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IPTG 異丙基-β-D-硫代半乳糖苷 基因工程：IPTG為安慰性誘導物，X-gal為生色底物，二者共同用于藍白斑篩選。IPTG可誘導載體lac操縱子DNA區段合成β-半乳糖苷酶氨基端片段，該片段可與宿主細胞編碼的缺陷型β-半乳糖苷酶實現基因內互補(α互補)。實現α互補的細菌暴露IPTG，鋪在含有X-gal生色底物的培養基上，可形成藍色菌落。外源DNA插入質粒的多克隆位點后可破壞α互補作用,將產生白色菌落。

異丙基硫代半乳糖苷（IPTG）是一種作用*的誘導劑，不被細菌代謝而十分穩定，因此被實驗室廣泛應用。當有乳糖存在時，lac操縱子（元）即可被誘導。在這個操縱子（元）體系中，真正的誘導劑并非乳糖本身。乳糖進入細胞，經b－半乳糖苷酶催化，轉變為半乳糖。后者作為一種誘導劑分子結合阻遏蛋白，使蛋白構象變化，導致阻遏蛋白與O序列解離、發生轉錄。

材料

1、誘導表達材料

( 1 ) LB （Luria—Bertani）)培養基酵母膏 (Yeast extract) 5g 蛋白胨 (Peptone) 10g

NaCl 10g 瓊脂 (Agar) 1-2%

蒸餾水 (Distilled water) 1000ml pH 7.0

適用范圍：大腸桿菌

( 2 ) IPTG 貯備液：2 g IPTG溶于10 mL 蒸餾水中，0 . 22 μm 濾膜過濾除菌，分裝成1 mL /份，－20 ℃ 保存。

( 3 ) l× 凝膠電泳加樣緩沖液：

50 mmol / L Tris -CI ( pH 6 . 8 )

50 mmol / L DTT

2 % SDS （電泳級）

0.1 ％ 溴酚藍

10 ％ 甘油

2、大腸桿菌包涵體的分離與蛋白純化材料

1 ）酶溶法

（1）裂解緩沖液：

50 mmol / L Tris-CI ( pH 8 . 0 )

1 mmol / L EDTA

100 mmol / LNaCI

（2）50 mmol / L PMSF

（3）10 mg / mL 溶菌酶。

（4）脫氧膽酸。

（5）1 mg / mL DNase I。2 ）超聲破碎法

( 1 ) TE 緩沖液。

( 2 ) 2×SDS -PAGE 凝膠電泳加樣緩沖液：

100 mmol / L Tris-HCI ( pH 8 . 0 )

100 mmol / L DTT

4 %SDS

0.2 ％ 溴酚藍

20 ％ 甘油

IPTG 異丙基-β-D-硫代半乳糖苷 基因工程實驗方案

1、外源基因的誘導表達

( 1 ）用適當的限制性內切核酸酶消化載體DNA 和目的基因。

( 2 ）按連接步驟連接目的基因和載體，并轉化到相應的宿主菌。

( 3 ）篩選出含重組子的轉化菌落，提取質粒DNA 作限制性內切核酸酶圖譜，DNA 序列測定確定無誤后進行下一步。

( 4 ）如果表達載體的原核啟動子為PL 啟動子，則在30 -32 ℃ 培養數小時，使培養液的OD600達0.4-0.6 ，迅速使溫度升42 ℃ 繼續培養3 -5h ；如果表達載體的原核啟動子為tac 等，則37 ℃培養細菌數小時達到對數生長期后加IPTG 終濃度為1 mmol / L。繼續培養3 -5h 。

( 5 ）取上述培養液1 mL , 1000g 離心，1 min ，沉淀，加100 μL 聚丙烯酰胺凝膠電泳上樣緩沖液后，作SDS -PAGE 檢測。

2、大腸桿菌包涵體的分離與蛋白質純化

1 ）細菌的裂解

常用方法有：① 高溫珠磨法；② 高壓勻漿；③ 超聲破碎法；④ 酶溶法；⑤ 化學滲透等。前三種方法屬機械破碎法，并且方法① 、② 已在工業生產中得到應用，后三種方法在實驗室研究中應用較為廣泛。下面介紹酶溶法和超聲破碎法的實驗步驟。

（1）酶溶法。常用的溶解酶有溶菌酶；β-1,3 -葡聚糖酶；β-1,6 -葡聚糖酶；蛋白酶；殼多糖酶；糖昔酶等。溶菌酶主要對細菌類有作用，而其他幾種酶對酵母作用顯著。

IPTG 異丙基-β-D-硫代半乳糖苷 基因工程主要步驟為：

① 4 ℃ ，5000rpm 離心，15 min ，收集誘導表達的細菌培養液（100 mL ）。棄上清，約每克濕菌加3 mL 裂解緩沖液，懸浮沉淀。

注意事項：培養噬菌體時，Top agar中的添加量為：25 μl/3 ml(24 mg/ml)。含有IPTG的培養基4℃避光保存，須在1~2 周內使用。

保存：IPTG要2-8°C冷藏保存，配制好后保存于-20°C，室溫可放置一個月。遠離熱源及氧化劑。